一提铁死亡（ferroptosis），大部分人脑子里都会过一条线：

铁负荷升高 → 脂质过氧化加重 → GPX4 等防线失守 → 细胞走上一条既不像坏死、也不像经典凋亡的死亡通路。

在细胞实验里，如果你想证明自己做的是ferroptosis，而不是“随便毒死了细胞”，

通常会成套做一堆检测：

细胞活力（CCK-8 / MTT、LDH 泄漏等）；脂质 ROS（比如 C11-BODIPY）；MDA（丙二醛）/ 脂质过氧化终末产物；细胞内铁离子水平；抗氧化系统相关蛋白（GPX4、SLC7A11 等）；再加一点形态学、线粒体功能相关证据。很多人搜的关键词是：

“铁死亡检测试剂盒”“ferroptosis 检测”“细胞 MDA 检测”“脂质过氧化检测试剂盒”

但真正动手设计的时候，很少静下心想一句：

在细胞和铁死亡这块，

**MDA 指标到底负责哪一环？

**应该怎么和其他 readout 搭配，既好看又好解释？

这篇就专门从细胞实验 + ferroptosis的角度，把丙二醛MDA含量测定 单拎出来聊一遍。

如果你对 MDA / 丙二醛和脂质过氧化的基本关系、检测原理和常见方法还没完全理顺，可以先结合总览文章《MDA 脂质过氧化检测全指南：原理、方法、实验步骤与试剂盒选择》看一遍，这篇可以当它的“细胞 + ferroptosis 实战篇”。

一、先摆位置：MDA 在铁死亡证据链里是哪一格？铁死亡相关的关键词很多：铁、GPX4、脂质 ROS、线粒体、GSH、SLC7A11……

如果把这些简单串成一条线，大致可以拆成几块：

铁负荷失衡细胞内游离 Fe²⁺ 增多；Fenton 反应更活跃，ROS 持续产生。脂质过氧化失控ROS 攻击多不饱和脂肪酸（PUFA）；形成脂质自由基、脂质过氧化物；最终分解出一批小分子终末产物，其中最常测的就是MDA（丙二醛）。防线崩溃GPX4、SLC7A11 等抗氧化系统被抑制或耗竭；GSH 降低，细胞失去“灭火器”。细胞命运线粒体形态改变；细胞活力下降，走向以 ferroptosis 为主的死亡路径。在这条链上，大致可以这么理解：

脂质 ROS 探针（C11-BODIPY 等）：抓的是“正在被氧化的脂质”；MDA / 丙二醛：量的是“脂质过氧化完了以后留下的终末产物”。一句话总结：

脂质 ROS 更像过程信号，MDA 更像“烧完以后留下多少尾气”。

在铁死亡检测试剂盒 或自搭 panel 里，这两类指标一般都会一起上。

二、什么情况下，细胞实验里加一项 MDA 是有价值的？很多人习惯把 MDA 当动物实验、组织水平的指标，

其实在细胞体系里用得好，同样很加分，尤其是这几类场景：

1. 典型 ferroptosis 诱导剂 + 抑制剂验证例如用 Erastin、RSL3 等造 ferroptosis 模型：

C11-BODIPY 已经看到了脂质 ROS 明显升高；再加一项细胞 MDA 检测：模型组 MDA 明显升高；Ferrostatin-1 等铁死亡抑制剂能把 MDA 压下来。这时候，MDA 就是在告诉你：

“不仅过程中的脂质 ROS 升高了，

脂质过氧化的终末产物也确实明显累积。”

2. 比较不同处理 / 药物对脂质过氧化的调节能力比如你要比：

不同候选药物对铁死亡的保护效果；不同剂量 / 时间点下脂质过氧化的严重程度。除了看 CCK-8 和脂质 ROS，

再加一列MDA（丙二醛含量测定），能让差异更具体、可量化。

3. 做“体内 + 体外”一整套证据链常见的组合是：

体内：大鼠 / 小鼠病变器官 + 血清里做 MDA（nmol/g、nmol/mL）；体外：相关细胞系里做 MDA（nmol/mg prot 或 nmol/10⁴ cells）；当两边趋势一致时，很好在讨论里说一句：

“体内器官和体外细胞里 MDA 的变化方向一致，支持……（略）”

简单说：

在细胞 + ferroptosis 研究里，MDA 适合做“进阶补刀”：

不是唯一的核心 readout，但能把“脂质过氧化这块”讲得更扎实。

体内部分怎么在不同器官和血清里安排 MDA 检测、配合 SOD/GSH 和病理指标，可以参考《动物实验里怎么用 MDA 指标讲故事？》，这一篇就专心负责细胞和 ferroptosis 这一侧的拼图。

三、细胞样本怎么准备？MDA 检测里几个容易被忽略的细节不管你手上的工具叫MDA 检测试剂盒、丙二醛试剂盒，还是脂质过氧化检测试剂盒，

只要说明书写了“适用于细胞样本”，大体思路都差不多。

1. 细胞数：量要够，宁可宽松一点贴壁细胞：

处理结束后，PBS 轻轻洗 1–2 次；用细胞刮刀刮下细胞；收集到预冷离心管中。悬浮细胞：

直接离心收集；PBS 洗 1–2 次即可。细胞数量的原则是：

先按试剂盒说明书推荐值来（比如每管对应 ~1×10⁶ cells）；如果第一轮预实验 ΔΔA 确实偏低，再适当增加细胞数重做；不要一上来就“拍脑袋加倍”。2. 裂解方式：要破干净，又别给自己制造额外氧化比较稳的一套流程：

加预冷的裂解液或样本缓冲液；冰浴超声（时间短、分段，避免发热）；低温离心，取上清做细胞 MDA 检测。注意几点：

全程放冰上，裂解时间尽量控制在可控范围内；如果打算用 nmol/mg prot 表达 MDA，记得留部分上清做蛋白定量（BCA 等）；尤其做铁死亡相关实验时，同一条件下的裂解方式越一致，数据越好看。3. 上样体积：别凭感觉瞎加有个常见小误区是：

“信号不高？那我多加点样本吧。”

在 MDA 检测里，这样做很容易踩两个坑：

样本太浓，反应超出线性范围，ΔΔA 顶在上限拉不开；样本本身颜色、浊度过重，影响比色法读数。更稳的做法是：

第一轮严格按说明书推荐体积做预实验；真觉得信号偏低，再调整细胞数或整体稀释倍数，而不是随手放大上样体积。各类样本（组织、细胞、血清 / 尿液等）在匀浆比例、离心条件、分装和冻存上的细节，可以在《MDA 检测的样本前处理与保存：不同样本怎么做，结果才靠谱？》那篇按类型一项项对照。

如果你已经按说明书做了，细胞 MDA 检测还是老遇到“信号太低 / 太高 / 组内差异大”这类怪现象，可以配合《MDA 丙二醛检测常见问题与排查（故障指南）》那篇，一边看 checklist 一边排查。

四、“铁死亡检测试剂盒”的组合思路：MDA 处在什么位置？很多厂家的“铁死亡检测试剂盒”本质上是一个panel 概念，

或者你自己也可以用现有试剂盒拼一套“铁死亡组合拳”。大致离不开几块：

细胞活力 / 损伤程度CCK-8 / MTT、LDH 泄漏等；说明“细胞确实受损了”。脂质 ROSC11-BODIPY 等探针；抓脂质过氧化过程中的活性物种。MDA / 丙二醛含量测定用比色法MDA 检测试剂盒 / 脂质过氧化检测试剂盒；细胞样本常用单位：nmol/mg prot 或 nmol/10⁴ cells。细胞内铁负荷Fe²⁺ 检测试剂盒、铁探针染色等；说明“这真是铁相关”的。相关蛋白GPX4、SLC7A11、ACSL4、FTH1 等；Western blot 或免疫荧光。在这套组合当中：

脂质 ROS 提供“过程信号”；MDA 提供“终末产物的量化证据”；再加上铁和 GPX4 / SLC7A11 的变化，整个 ferroptosis 证据链就比较完整。一个比较常见、也容易写的顺序是：

细胞活力明显下降 → 脂质 ROS 升高 → 细胞 MDA 含量显著增加 →

Fe²⁺ 升高、GPX4 等防线下调 → 铁死亡抑制剂能把这条链拉回来。

如果你还在纠结到底选哪种 MDA / 脂质过氧化检测试剂盒，或者 TBARS、自配体系、微量比色、HPLC 之间怎么取舍，可以一起参考《MDA 丙二醛含量测定试剂盒怎么选？TBARS、微量比色和 HPLC 一次说透》，把“选什么工具”和“在 ferroptosis 里怎么搭 panel”连起来看。

五、结果怎么读？几种常见模式下，MDA 帮你确认什么1. 标准 ferroptosis 模式典型结果组合：

细胞活力显著下降；C11-BODIPY 脂质 ROS 信号明显增强；细胞内 MDA 含量显著升高；细胞内 Fe²⁺ 升高；GPX4、SLC7A11 等表达下调；caspase-3 等经典凋亡指标变化不明显。这时候，你可以很自然地说：

“本实验更多符合铁依赖性脂质过氧化（ferroptosis）的特征。”

MDA 在这里的作用就是：

把“脂质过氧化有多严重”具体量出来，而不是只靠荧光强弱。

2. 有氧化应激，但不一定以 ferroptosis 为主还有一种常见组合是：

细胞活力下降；ROS 总体升高；MDA 只有轻微升高，或差异不大；铁离子变化不明显；反而是 caspase-3、PARP 裂解这些凋亡相关指标很突出。这种情况下，更稳妥的解释是：

“存在氧化应激和一定程度脂质过氧化，

但主导的细胞死亡模式可能更偏向凋亡或其他形式。”

MDA 在这时反而帮你“踩刹车”，

提醒你别一上来就把所有死亡都叫 ferroptosis。

3. 体内 + 体外：用 MDA 把两头对上号如果你已经在动物实验中看到：

模型组织（如心、肝、肾、脑）MDA 明显升高；干预可以显著降低组织 MDA 水平；然后在相关细胞模型里再看到：

高糖 / 高脂 / 诱导剂组细胞 MDA 升高；同样的药物或处理可以明显压低 MDA；那这时候，MDA 就很适合用来写一句“体内外一致性”的话，让故事收束得更完整。

不同实验体系下你会用到 nmol/mg prot、nmol/10⁴ cells、nmol/g 这些不同写法，背后公式怎么拆、单位怎么选更合适，可以配合《丙二醛 MDA 含量检测结果怎么计算？4 种常见单位和公式讲透》一起看，把数字算清楚、写清楚。

六、细胞 MDA 检测里，和动物实验不太一样的几个坑1. 细胞密度没控好，差异被“稀释”掉常见问题：

起始接种密度太低，终点细胞总量不足；不同孔细胞密度差别大，同组内部 MDA 波动明显。建议：

先用 CCK-8 或显微镜摸清楚：在你这个处理时间下，什么接种密度比较合适；处理前尽量保证各组细胞数接近；贴壁细胞刮取的时候，手法统一，不要有的孔刮得很干净，有的留半层。2. 处理时间点选得不合适：太早 or 太晚太早：脂质过氧化刚起步，MDA 终末产物积累有限，差异不明显；太晚：大量细胞已经死亡、脱落，留下的是相对“顽强”的细胞，MDA 反而被平均掉。比较实用的策略：

先用 CCK-8 做一个时间 × 剂量 的小试验；选一个细胞活力下降大约 30–50% 的时间点来测 MDA，往往更容易看出有意义的差异。3. 单位没想清楚：nmol/mg prot 还是 nmol/10⁴ cells？细胞样本里，常见的两种 MDA 表达方式是：

nmol/mg prot

适合和其他酶活（SOD、GSH 等）一起写，大家都按蛋白归一化；

nmol/10⁴ cells 或 nmol/10⁶ cells

更直观地理解为“平均每多少个细胞有多少 MDA”。

一般建议：

如果你在动物实验里用的是 “nmol/mg prot”，

细胞实验也沿用 nmol/mg prot，会让整篇文章看起来更统一；

只有在特别强调“单细胞水平”或微生物实验时，再重点考虑 nmol/10⁴ cells 这种写法。

七、写进论文时怎么说？给你几个直接能套的句式1. 方法部分：细胞 MDA 检测采用比色法 MDA 检测试剂盒测定细胞中丙二醛（MDA）含量。处理结束后收集各组细胞，经预冷裂解、离心取上清用于检测，结果以 nmol/mg 蛋白（或 nmol/10⁴ cells）表示，反映细胞脂质过氧化终末产物水平。

如果要点一下 ferroptosis，可以加一句：

作为铁死亡相关脂质过氧化损伤的一个指标。

2. 结果部分：配合 ferroptosis 其他 readout 一起写示例一：典型 ferroptosis 模式

与对照组相比，Erastin 处理组细胞内 MDA 含量显著升高（**P<0.001），同时 C11-BODIPY 脂质 ROS 荧光强度明显增强、细胞内 Fe²⁺ 水平升高、GPX4 表达下调，提示细胞发生明显的铁依赖性脂质过氧化。加入铁死亡抑制剂 Ferrostatin-1 后，上述变化均不同程度得到逆转，MDA 含量及脂质 ROS 水平均明显下降，GPX4 表达部分恢复，进一步支持 ferroptosis 在该模型中的作用。

示例二：体内外数据对应

体内实验中，模型组小鼠肾组织 MDA 含量显著升高，而 XX 处理可明显降低肾组织 MDA 水平。与此一致，在高糖诱导的体外细胞模型中，高糖组细胞内 MDA 含量显著增加，XX 处理可显著抑制 MDA 升高，提示该干预可在体内外同时减轻高糖相关的脂质过氧化损伤。

你只需要把其中的“Erastin、Ferrostatin-1、XX”以及器官、细胞系名字替换成你自己的，就能直接用。

小结：在细胞和 ferroptosis 研究里，让 MDA 做“关键补刀”最后压一下重点，方便你之后写摘要和讨论：

在细胞和铁死亡研究中，MDA 是脂质过氧化终末产物的量化指标，

和脂质 ROS、Fe²⁺、GPX4 等一起看，才能把 ferroptosis 这条证据链讲完整。

真正好用的细胞 MDA 结果，来自几个前提：

细胞数够、时间点合适、取样与裂解方式统一、单位选对，再配上稳定的MDA 检测试剂盒 / 脂质过氧化检测试剂盒。

只要把这些细节打磨好，细胞里的 MDA 就不会只是“顺手测一下”的小配角，

而是可以撑起一张图、支撑一段结果和两段讨论的关键 readout。